Real-time detectie ADC-doelwitten op circulerende tumorcellen mogelijk bij triple-negatieve borstkanker en ovariumcarcinoom
Onderzoekers onderzochten de detecteerbaarheid van klinisch relevante ADC-doelwitten (TROP-2, FRα, PD-L1) op circulerende tumorcellen bij patiënten met triple-negatieve borstkanker en epitheel ovariumcarcinoom.
Met behulp van flowcytometrie en het Parsortix-systeem werd aangetoond dat deze doelwitten betrouwbaar kunnen worden gemeten in patiëntmonsters, waarbij TROP-2 extra waarde biedt bij tumoren met lage EpCAM-expressie.
De studie bevestigt de haalbaarheid van een real-time workflow voor het monitoren van target-expressie, waarmee ruimtelijke heterogeniteit beter kan worden gevolgd dan met een enkele weefselbiopsie. Integratie van ADC-markers in CTC-workflows kan toekomstig therapeutisch beslissen bij deze solide tumoren ondersteunen.
Abstract (original)
BACKGROUND: Antibody-drug conjugates (ADCs) are transforming the therapeutic landscape of solid tumours. Both patient selection and ADC efficacy in triple-negative breast cancer (TNBC) and epithelial ovarian cancer (EOC) are impacted by target antigen expression, which is often heterogeneous. Single tissue biopsies cannot capture this spatial heterogeneity, creating a need for real-time assessment to guide treatment. Circulating tumour cells (CTCs) may serve as minimally invasive biomarkers that can reflect ADC target expression. The aim of this study was to assess the detectability of clinically relevant ADC targets on CTCs in TNBC and EOC. METHODS: ADC targets TROP-2 (TNBC) and FRα (EOC) were selected, along with emerging targets PD-L1 and CLDN6. Flow cytometry was used to characterise surface target antigen expression in three TNBC (MDA-MB-231, MDA-MB-468, HCC1937) and three EOC (SKOV3, OVCAR3, Kuramochi) cell lines. Cell spike-in assays using the Parsortix® system were performed to optimise in-cassette fixation and staining conditions, which were then applied to patient-derived samples for CTC enrichment and immunostaining. RESULTS: Flow cytometry revealed heterogeneous antigen expression across cell lines. In TNBC, TROP-2 was uniformly expressed including in EpCAM-low MDA-MB-231 cells, whereas FRα was minimal or absent. PD-L1 was highly expressed in MDA-MB-231 and HCC1937 but low in MDA-MB-468. In EOC, FRα and TROP-2 were detectable in SKOV3 and OVCAR3 but low or absent in Kuramochi cells. Spike-in assays confirmed in-cassette detection of TROP-2, FRα, and PD-L1 following Parsortix® enrichment. In patient samples, TROP-2+ CTCs were identified in TNBC and FRα+ CTCs in EOC. CONCLUSION: This study demonstrates the feasibility of real-time ADC target assessment on CTCs using epitope-independent enrichment. TROP-2 shows additional utility for detecting CTCs with low EpCAM expression in TNBC. Incorporating ADC target markers into CTC workflows may enable monitoring of target expression, with potential to guide therapeutic decision-making in TNBC and EOC.
Dit artikel is een samenvatting van een publicatie in The journal of liquid biopsy. Voor het volledige artikel, alle details en referenties verwijzen wij u naar de oorspronkelijke bron.
Lees het volledige artikelDOI: 10.1016/j.jlb.2026.100479





